Презентация Основы гематологии для инженеров. Приборы, реагенты, кровь онлайн

На нашем сайте вы можете скачать и просмотреть онлайн доклад-презентацию на тему Основы гематологии для инженеров. Приборы, реагенты, кровь абсолютно бесплатно. Урок-презентация на эту тему содержит всего 86 слайдов. Все материалы созданы в программе PowerPoint и имеют формат ppt или же pptx. Материалы и темы для презентаций взяты из открытых источников и загружены их авторами, за качество и достоверность информации в них администрация сайта не отвечает, все права принадлежат их создателям. Если вы нашли то, что искали, отблагодарите авторов - поделитесь ссылкой в социальных сетях, а наш сайт добавьте в закладки.
Презентации » Технология » Основы гематологии для инженеров. Приборы, реагенты, кровь



Оцените!
Оцените презентацию от 1 до 5 баллов!
  • Тип файла:
    ppt / pptx (powerpoint)
  • Всего слайдов:
    86 слайдов
  • Для класса:
    1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11
  • Размер файла:
    4.19 MB
  • Просмотров:
    152
  • Скачиваний:
    1
  • Автор:
    неизвестен



Слайды и текст к этой презентации:

№1 слайд
Основы гематологии для
Содержание слайда: Основы гематологии для инженеров

№2 слайд
План обучения Применение
Содержание слайда: План обучения 1、Применение гематологических анализаторов 2、Кровь: состав и физиология 2、Этапы развития гематологических анализаторов. 3、Клиника: результаты и интерпретация. 4、Установка и настройка анализатора. 5 Устройство и обслуживание анализатора.

№3 слайд
Гематологический анализатор
Содержание слайда: Гематологический анализатор: что это? Использование анализа крови в диагностике.

№4 слайд
Кровь что нам известно
Содержание слайда: Кровь: что нам известно

№5 слайд
Состав цельной крови
Содержание слайда: Состав цельной крови

№6 слайд
Клетки крови и их размеры WBC
Содержание слайда: Клетки крови и их размеры WBC RBC PLT Время жизни: 7 дней 120 дней 8 дней Размер: 20 мкм 6.7~7.7 мкм 2~30фл Функция: Борьба перенос О2 образование с инфекцией и СО2 тромба

№7 слайд
WBC лейкоциты Гранулоциты
Содержание слайда: WBC лейкоциты Гранулоциты ~75% моноциты ~5% лимфоциты ~25% Нейтрофилы (65~70%) Эозинофилы (0.5%~1.5%) Базофилы (0~1%)

№8 слайд
Клеточный состав крови
Содержание слайда: Клеточный состав крови

№9 слайд
RBC Гемоглобин красный цвет
Содержание слайда: RBC Гемоглобин: красный цвет эритроцитов. При дыхании: HGB переносит О2 в органы и удаляет СО2. В крови человека больше всего - RBC, Взрослые мужчины: 4.29-5.23 х1012 Взрослые женщины: 3.83-4.83 х1012 Диаметр RBC в среднем 7,2 нм (встречаются от 6 до 9 нм).

№10 слайд
WBC WBC только с ядром
Содержание слайда: WBC WBC – только с ядром; некоторые WBC - фагоциты (поглощение частиц, проникших извне); - функции предохранения организма от инфекций. У здоровых пациентов: 4-10 х109 кл/л Диаметр от 7 до 25 нм.

№11 слайд
PLT Ядро отсутствует это
Содержание слайда: PLT Ядро отсутствует; это небольшие несимметричные тельца, принимающие участие с процессах свёртывания и ретракции сгустка. У здоровых пациентов - 100-300х1012 Диаметр : от 2 до 3 нм

№12 слайд
HGB Гемоглобин
Содержание слайда: HGB Гемоглобин – железо-содержащий глобулин. HGB основной компонент RBC. Определяет красный цвет крови. Связывается с кислородом в лёгких. Артериальная кровь алого цвета, а венозная кровь цвета тёмного аметиста из-за комплекса Hgb-CO2. Содержание у взрослых мужчин: 120-160 г/л Содержание у взрослых женщин: 110-150 г/л

№13 слайд
Методы счёта клеток крови
Содержание слайда: Методы счёта клеток крови Ручной счёт: Счёт под микроскопом -в камере Гаряева -в мазках

№14 слайд
Принципы ручного анализа Счёт
Содержание слайда: Принципы ручного анализа 1、Счёт клеток: RBC; WBC; PLT и проч. под микроскопом 2、Количественное определение HGB 3、Дифференцировка WBC в мазке при помощи красителей 4、Другие характеристики: объём клеток, счёт ретикулоцитов и проч.

№15 слайд
Современный счёт клеток крови
Содержание слайда: Современный счёт клеток крови 1950~80 годы (полу-авто): разбавление образца вручную, затем счёт на приборе, высокая зависимость от предыдущего анализа, большая ошибка определения После 1980 года: автоматизация, забор крови анализатором , авторазбавление , автоматическое добавление литика, автоматический счёт. Высокая точность и воспроизводимость.

№16 слайд
От микроскопа к автомату
Содержание слайда: От микроскопа к автомату Ручное определение Высокая случайная ошибка, ошибки метода и вспомогательного оборудования. Для подсчёта клеток необходимо больше времени и усилий, результаты имеют низкие точность и воспроизводимость.

№17 слайд
Принципы анализа на приборах
Содержание слайда: Принципы анализа на приборах

№18 слайд
Принцип счёта на основе
Содержание слайда: Принцип счёта на основе кондуктометрии Клетки крови являются изоляторами, но они не влияют на проводимость цельной крови из-за маленьких размеров. Однако если клетку пропускать через небольшое отверстие, она будет сильно изменять проводимость. Когда клетка крови будет проходить через микроапертуру, можно измерить изменение проводимости на фоне постоянного тока. Результат показан на рисунке

№19 слайд
Анализ импульсов Если через
Содержание слайда: Анализ импульсов Если через раствор электролита пропускать постоянный ток, то пропорционально возрастанию сопротивления между двумя электродами будет генерироваться электрический импульс по напряжению Когда через микроапертуру протекает определённый объем суспензии клеток крови, генерируется серия импульсов, подсчёт которых даёт общее количество клеток. Поскольку клетки крови имеют разный диаметр, их проводимость различается и при дифференцировке импульсов можно группировать клетки по объёмам.

№20 слайд
Принцип счёта Около апертуры
Содержание слайда: Принцип счёта 1 Около апертуры генерируется электромагнитное поле, которое пересекает клетка. При прохождении через электрическое поле калиброванной апертуры клетки создают дополнительное сопротивление. Это приводит к генерированию электронного импульса, который усиливается, измеряется, и оцифровывается. Сначала кровь разводится дилюентом (изотонический проводящий раствор), затем пропускается через калиброванную апертуру. По обе стороны апертуры располагаются два электрода, через которые протекает постоянный ток.

№21 слайд
Принцип счёта Когда клетка
Содержание слайда: Принцип счёта 2 Когда клетка крови проходит через апертуру, сопротивление между электродами возрастает, поскольку ток остаётся постоянным. Большие клетки создают бОльшее сопротивление, а маленькие – более низкое. Таким образом, по измеренному напряжению можно оценить размеры клеток. В процессе прохождения клетки измеряемое напряжение меняется. Чем сильнее клетка изменяет электрическое поле, тем выше напряжение. Далее происходит оцифровка импульсов и их группировка по высоте для разделения клеток на RBC и PLT.

№22 слайд
Принцип счёта За
Содержание слайда: Принцип счёта 3 За фиксированное время через апертуру проходит определённое количество клеток крови. Измеряют высоту импульсов, которые они генерировали; группируют по размерам, оцифровывают и по калибровочным коэффициентам определяют концентрации RBC и PLT

№23 слайд
Принцип счёта Как известно,
Содержание слайда: Принцип счёта 4 Как известно, число RBC в крови человека – 1012/л , WBC - 109/л , таким образом клеток RBC в 1000 раз больше WBC. При счёте RBC, клетки WBC можно не принимать во внимание, поскольку ошибка 1/1000 не влияет на результаты по эритроцитам. По диаметру RBC, WBC и PLT различны: RBC: 6-9 мкм; WBC: 7-25 мкм; PLT: 2-3 мкм При прохождении через апертуру они генерируют разные импульсы: самые большие - у WBC, меньше у RBC, а у PLT – самые маленькие

№24 слайд
счёт WBC Перед счётом клеток
Содержание слайда: счёт WBC Перед счётом клеток в WBC-камеру с резведённой кровью добавляется лизирующий реагент, который содержит феррицианид и цианид калия, (используется и безцианидный раствор). Этот раствор разрушает мембраны клеток и высвобождает гемоглобин из RBC, после этого производится счёт съёжившихся WBC.

№25 слайд
HGB testing При разрушении
Содержание слайда: HGB testing При разрушении клеточной мембраны RBC, HGB вытекает из цитозоля и попадает в плазму. Все формы гемоглобина ( c кислородом, углекислым газом и др.) взаимодействуют с цианидом калия и образуется цианметгемоглобин. Его концентрацию измеряют спектрофотометрически непосредственно в WBC камере при длине волны 540-550 нм. HGB= lg (бланк/образец) x F (калибровочный коэффициент)

№26 слайд
Ошибки при подсчёте В
Содержание слайда: Ошибки при подсчёте В идеальном случае клетки проходят через апертуру по очереди. В реальности через апертуру могут одновременно пройти и две и три клетки одновременно. При этом генерируется один большой импульс и считается как одна клетка. Результаты получаются заниженными. Эту ситуацию называют superposition counting loss (ошибки при наложении импульсов).

№27 слайд
Коррекция ошибок наложения
Содержание слайда: Коррекция ошибок наложения импульсов Для исправления заниженных результатов,некоторые анализаторы имеют специальные устройства или программную коррекцию. Коррекция осуществляется по закону «posson»: Когда общий счёт менее 8000 клеток, поправок нет. Когда клеток в образце от 8000 до 38000,добавляется по 100 клеток на каждые 900. Когда клеток более 38000, прибавляют по 200 клеток на каждые 800. Такой скорректированный счёт наиболее близок к реальным клиническим данным.

№28 слайд
Апертура Апертура ключевое
Содержание слайда: Апертура 1 Апертура – ключевое устройство для формирования сигнала и представляет собой тонкую пластинку из рубина или сапфира ,эта пластинка зажата или приклеена в стеклянной или пластиковой перегородке . Диаметр колеблется от 75 до 100 мкм. Апертуру устанавливают на боковой части камеры или снизу. 100 мкм апертура рассчитана на прохождение и тестирование частиц 2-40 мкм. На величину тока в электролите между электродами А и В влияет диаметр апертуры. В физ.растворе 100 мкм апертура имеет сопротивление около 15kΩ. При засоре апертуры ни в коем случае нельзя использовать механические способы очистки. Это может привести к сколам или разрушению апертуры. Апертура - деталь с точными геометрическими размерами. Обращайтесь бережно.

№29 слайд
Содержание слайда:

№30 слайд
Гистограмма клеток крови
Содержание слайда: Гистограмма клеток крови Гематологический анализатор отображает гистограммы распределения по объёму клеток RBC,WBC и PLT. В гистограмме по x-оси отложены размеры клеток (высота импульса), а по Y-оси число клеток (частота импульсов). Расчёт гистограммы и её представление формирует компьютер. Гистограмма позволяет не только осмыслить результаты анализа на интуитивном уровне, но и оценить рабочие условия анализатора.

№31 слайд
Blood Cell pulse and histogram
Содержание слайда: Blood Cell pulse and histogram

№32 слайд
WBC Histogram
Содержание слайда: WBC Histogram

№33 слайд
Три клеточные популяции WBC
Содержание слайда: Три клеточные популяции WBC -лимфоциты -средняя фракция (базофилы+эозинофилы+моноциты) -гранулоциты (палочко-+сегментоядерные) WBC гистограмма Слева направо: лимфоциты, мононуклеары и гранулоциты; пограничные значения объёма: 35-90; 90-160; 160-450фл

№34 слайд
Гематологический анализатор
Содержание слайда: Гематологический анализатор группирует клетки от 35 до 450 фл относительно их размера. Первая группа: 35 – 90 фл: популяция мелких клеток, преимущественно лимфоциты Вторая группа: 90 – 160 фл популяция средних клеток, в основном моноциты, часть эозинофилов, базофилов и немного нейтрофилов . Третья группа: 160 – 450 фл популяция больших клеток, преимущественно гранулоциты.

№35 слайд
Гисторамма of WBC патология
Содержание слайда: Гисторамма of WBC: патология Гистограмма у пациентов с желтухой: уровень липидов в RBC повышен, а содержание белка - понижено, что приводит к повышенной прочности мембраны, и RBC плохо лизируются реагентом.

№36 слайд
Гистограмма RBC
Содержание слайда: Гистограмма RBC

№37 слайд
Анализ RBC осуществляется в
Содержание слайда: Анализ RBC осуществляется в пределах от 36 до 360 фл: по X-оси отложены размеры клеток (высота импульса), по Y-оси отложено число клеток (частота импульсов). Нормальные RBC распределены от 50 до 200 фл и их разбивают на два группы: первая – от 50 до 125 фл выглядит как симметричная кривая. С правой стороны от этой кривой располагаются импульсы для клеток от 125 до 200 фл, которые являются крупными или слипшимися RBC и netting shape RBC. Анализ RBC осуществляется в пределах от 36 до 360 фл: по X-оси отложены размеры клеток (высота импульса), по Y-оси отложено число клеток (частота импульсов). Нормальные RBC распределены от 50 до 200 фл и их разбивают на два группы: первая – от 50 до 125 фл выглядит как симметричная кривая. С правой стороны от этой кривой располагаются импульсы для клеток от 125 до 200 фл, которые являются крупными или слипшимися RBC и netting shape RBC. При некоторых патологиях изменяется размер RBC и кривая распределения сдвигается влево или вправо, а иногда появляется второй пик или плечо, и ширина пика увеличивается.

№38 слайд
Гистограмма при патологиях
Содержание слайда: Гистограмма при патологиях RBC Двойной пик указывает на наличие анемии или фильтрации крови: имеются различные по размерам группы RBC.

№39 слайд
PLT гистограмма
Содержание слайда: PLT гистограмма

№40 слайд
Анализ PLT осуществляется в
Содержание слайда: Анализ PLT осуществляется в пределах от 2 до 30 фл. В норме гистрограмма выглядит достаточно симметрично от 2 до 20 фл; максимум пика находится в пределах 7.6 - 13.2 фл. Если преобладают мелкие тромбоциты пик смещается влево, если больше крупных - вправо. Анализ PLT осуществляется в пределах от 2 до 30 фл. В норме гистрограмма выглядит достаточно симметрично от 2 до 20 фл; максимум пика находится в пределах 7.6 - 13.2 фл. Если преобладают мелкие тромбоциты пик смещается влево, если больше крупных - вправо. Если пик на гистограмме становится узким это указывает, что число PLT снижается. При наличие мелких RBC и их фрагментов наблюдается второй пик справа от основного.

№41 слайд
Гистограмма PLT при
Содержание слайда: Гистограмма PLT при патологиях Двойной пик на кривой распределения наблюдается при засоре или низком уровне PLT.

№42 слайд
Принцип анализа HGB на CC
Содержание слайда: Принцип анализа HGB на CC20 +

№43 слайд
Подготовка проб крови и
Содержание слайда: Подготовка проб крови и интерпретация параметров

№44 слайд
Забор образцов крови .
Содержание слайда: Забор образцов крови 1. Венозную кровь можно собирать с использованием вакуумной пробирки ли при атмосферном давлении. В пробирке или шприце уже должен содержаться антикоагулянт. Обычно это EDTA.K2.2H2O. Его содержание колеблется в пределах 1.5-2.2мг/мл. После сбора крови следует её тщательно и осторожно перемешать. Рекомендуемый метод: переворачивать пробирку вверх-вниз пробкой, периодически вращая между ладонями 3-5мин, сильно не встряхивать! 2. Для сбора капиллярной крови используют пробирку, суженную внизу и с антикоагулянтом, при перемешивании смочить все стенки, прибор использует при анализе 9.8 мкл крови. 3. Предварительное разведение капиллярной крови: Обычно кровь забирают с кончика пальца. Специальный капиллярдля крови имеет объём 20 мкл. Рекомендуется отбирать не менее 30 мкл крови в обычную или пробирку или в ссуженную для возможного повторения анализа. Для разведения необходимо к 20мкл образца добавить 700 мкл дилюента (соотношение 1:36). Для анализа аппарат забирает 300 мкл.

№45 слайд
Периферическая или венозная
Содержание слайда: Периферическая или венозная кровь Капиллярная кровь: - Удобно забирать, низкая стоимость (капилляр без антикоагулянта) - Только один анализ, легко образуется сгусток - Сильно зависит качество от манипуляций оператора - Разбавленные образцы выдерживают 3~5 мин, анализировать в течение 20 мин Венозная кровь: - Из одного образца можно сделать много анализов - Высокая стоимость, необходим антикоагулянт, нужна квалификация для забора образца - Для некоторых пациентов имеются ограничения - Хорошая воспроизводимость (до анализа выждать некоторое время), - Результаты не изменяются в течение 8 час.

№46 слайд
Принцип работы реагентов .
Содержание слайда: Принцип работы реагентов 1. Действие лизирующего реагента: А. быстро лизирует RBC, высвобождает HGB, образующиеся фрагменты RBC не влияют на счёт WBC; Б. Переводит HGB в форму, пригодную для фотометрирования; В. Мембраны WBC делает проницаемыми для вытекания цитозоля, сохраняя гранулы и ядро WBC. 2. Функции дилюента: А. Разбавляет образец, предотвращает образование сгустков, клетки не образуют агломератов; Б. Создаёт нужное осмотическое давление, при котором клетки крови сохраняют нативную форму и образуют нужный объём; В. У этого электролита такие свойства проводимости, что возникающий ток достаточен для анализа. 3. Действие промывающей жидкости: в основном для очистки трубок и апертуры; такую очистку выполняет прежде всего дилюент; очищающая жидкость создаёт пену и ею пользуются по завершению работы, после 60 тестов (можно изменять), при ручной промывке и перед выключением; этот раствор очищает все компоненты, контактирующие с кровью; пробозаборник омывается дилюентом. Концентрированный ферментативный очиститель (E-Z очиститель): E-Z промывающий раствор хорошо эмульгирует липиды и расщепляет белки, удаляя налипшие сгустки, переводя их в водо-растворимую форму, очищая жидкостные цепи. Раствор гипохлорита: Окисляет липиды и белки, делая их гидрофильными; далее окисленные молекулы легко эмульгируются.

№47 слайд
MicroCC plus
Содержание слайда: MicroCC20 plus

№48 слайд
Принципы работы и устройство
Содержание слайда: Принципы работы и устройство гематологического анализатора

№49 слайд
Технические характеристики
Содержание слайда: Технические характеристики 1、Дифференцировка WBC по 3 популяциям, 20 параметров и 3 гистограммы. 2、Сенсорный цветной экран с диагональю 10.4 дюйма, в комплекте мышь и клавиатура. 3、Объём анализируемого образца 9.8 мкл. Цельная кровь, капиллярная кровь, предразведение. 4、50000 анализов в памяти, USB порт для передачи данных. 5、Скорость анализа: 60 тестов/ч 6、Для гистограмм RBC/PLT/WBC предусмотрено изменение границ счёта для получения более точных результатов.

№50 слайд
Основные результаты P A R A M
Содержание слайда: Основные результаты 20 P A R A M T E R

№51 слайд
Измеряемые параметры
Содержание слайда: Измеряемые параметры

№52 слайд
Параметры из гистограмм
Содержание слайда: Параметры из гистограмм

№53 слайд
Рассчётные параметры
Содержание слайда: Рассчётные параметры

№54 слайд
Вычисляемые параметры
Содержание слайда: Вычисляемые параметры

№55 слайд
Вычисляемые параметры
Содержание слайда: Вычисляемые параметры

№56 слайд
Установка анализатора и
Содержание слайда: Установка анализатора и проверка

№57 слайд
Распаковка Распаковать
Содержание слайда: Распаковка Распаковать коробку Осторожно вынуть прибор из ящика Проверить содержание ящика по упаковочному листу Хранить упаковку для возможной транспортировки

№58 слайд
Требования к помещению -без
Содержание слайда: Требования к помещению -без прямого солнечного света; -без пыли; -без сильного электромагнитного излучения; -достаточно большая площадь комнаты и надёжный стол.

№59 слайд
Требования к питанию
Содержание слайда: Требования к питанию Напряжение 110V~220V 50/60 Гц 96 ВА

№60 слайд
Лицевая панель . Сенсорный
Содержание слайда: Лицевая панель 1. Сенсорный экран 2. Световой индикатор: жёлтый при запуске, светится красным после начала анализа, жёлтый после завершения тестирования. 3. Кнопка прогона бумаги из принтера. 4. Кнопка забора пробы: после нажатия кровь всасывается в пробозаборник из пробирки. 5. Крышка принтера: место для установки термобумаги. 6. Игла пробозаборника: образец из пробирки поступает в камеры для счёта 7. Клавиша забора пробы: дублирование кнопки 4

№61 слайд
Вид сзади . Защёлка задней
Содержание слайда: Вид сзади 1. Защёлка задней дверцы: открывать при замене реагента 2. Гнездо для клавиатуры: PS/2 разъём 3. Гнездо для мыши: PS/2 разъём 4. USB порт 5. RS-232 порт: для подключения устройств с передачей данных 6. Сетевой порт 7. Разъём питания: к внешнему блоку 8. Выключатель питания: кнопка для включения прибора 9. Датчик уровня дилюента 10. Штуцер для заземления 11. Датчик уровня очистителя 12. Штуцер для очистителя 13. Штуцер для дилюента 14. Штуцер для сливных вод

№62 слайд
Подготовка к включению Перед
Содержание слайда: Подготовка к включению Перед запуском, оператор должен выполнить следующие процедуры: Проверить соответствие дилюента, литика и очистителя для выполнения анализов. Слить отработанный раствор, проверить трубки, чтобы не было пережимов, и их подсоединения к штуцерам. Проверить источник питания на безопасность и и подсоединения к разъёму питания. Проверить наличие бумаги во встроенном принтере или установку внешнего принтера.

№63 слайд
Включение Включить MicroCC
Содержание слайда: Включение Включить MicroCC20: засветится индикатор, система проверяет состояние компонентов, произведёт тестовые перемещения, запустится проверка фона, см. рисунок:

№64 слайд
Допустимые фоновые значения
Содержание слайда: Допустимые фоновые значения Допустимые фоновые значения

№65 слайд
Содержание слайда:

№66 слайд
Установка системных параметров
Содержание слайда: Установка системных параметров

№67 слайд
Анализ On the main manual
Содержание слайда: Анализ On the main manual click ”Test”,enter the sample test window

№68 слайд
Калибровка On the main screen
Содержание слайда: Калибровка On the main screen click “calibrate” ,“calibrate by manual” or “calibrate automatically”。

№69 слайд
Контроль качества MicroCC has
Содержание слайда: Контроль качества MicroCC20 has three kind of controls,L-J、X-B and X-R

№70 слайд
Установка для X-B контроля
Содержание слайда: Установка для X-B контроля

№71 слайд
Установка X-R для контроля
Содержание слайда: Установка X-R для контроля Установка X-R для контроля

№72 слайд
Распечатка из базы данных On
Содержание слайда: Распечатка из базы данных On the main screen click “history data” ,open the history data list.

№73 слайд
Выключение On the main screen
Содержание слайда: Выключение On the main screen click “Power off”,the instrument will tip the dialogue :

№74 слайд
liquid path structure
Содержание слайда: 20 liquid path structure

№75 слайд
Liquid path cleaning
Содержание слайда: Liquid path cleaning

№76 слайд
Waste drain
Содержание слайда: Waste drain

№77 слайд
Diluent s circuit
Содержание слайда: Diluent's circuit

№78 слайд
Routine maintenance . Startup
Содержание слайда: Routine maintenance 1. Startup and shutdown process At startup, the instrument will run mechanical component test and blank test, for user to discover problem as soon as possible. While running shutdown operation, daily shutdown maintenance program will be automatically performed. After shutting off instrument power, just clean workbench and instrument surface. 2. Automatic rinse If number of samples instrument tests has reached the number preset by user, then the instrument will run automatic rinse program. User can adjust automatic rinse frequency at will. Refer to Chapter 7, System Setup. Rinse can also be done in “Maintenance” menu. 3. Clean instrument surface Keep instrument working environment clean. Instrument surface can be cleaned with neutral detergent and wet cloth.

№79 слайд
Backflush Back flush gem
Содержание слайда: 1 Backflush Back flush gem hole, eliminate block-hole. 2. Drain counting cell Drain off diluent in WBC and RBC counting cells. 3. Drain fluid circuit Drain off liquid in fluid circuit. 4. Eliminate block-hole The instrument will execute one special program for rinse the tube.

№80 слайд
Reagent filling Reagent
Содержание слайда: 5 Reagent filling 5 Reagent filling In sample test, reagents will be automatically filled, if drain operation is run or reagents are replaced, reagent filling is needed. All reagents: fill diluent, lysis solution and cleaner into related tubings. Diluent: fill diluent into related tubing. Lysis solution: fill lysis solution into related tubing. Cleaner: fill cleaner into related tubing. 6. Rinse Rinse probe, sampling needle and test tubing.

№81 слайд
E-Z solution soaking E-Z
Содержание слайда: 7 E-Z solution soaking 7 E-Z solution soaking Suction 1.6ml probe rinsing solution with sampling needle to fluid circuit and counting cells. The user shall perform E-Z solution soaking operation once a week. Firstly, insert sampling needle into E-Z solution bottle, then press “E-Z solution soaking” key, run E-Z solution soaking operation. 8 Probe rinsing solution soaking Suction 1.6ml probe rinsing solution with sampling needle to soak fluid circuit and counting cells. The user shall perform probe rinsing solution soaking operation once a week. Firstly, insert sampling needle into probe rinsing solution bottle, then press “Probe rinsing solution soaking” key, run probe rinsing solution soaking operation.

№82 слайд
Trouble shooting . Instrument
Содержание слайда: Trouble shooting 1 1. Instrument cannot be started up ——check if instrument is powered on ——check if power plug gets loose or falls off ——check voltage 2. Instrument cuts power automatically ——check instrument power is connected or not ——check power cable is loose or not ——power off instrument internal circuit breaker, and restart.

№83 слайд
. Temperature abnormal .
Содержание слайда: 3. Temperature abnormal 3. Temperature abnormal ——in software main menu, click “System Info” -> “System Status”, check environment temperature, if not within 15C~35C range, restore instrument ambient temperature to this range 4. Blank counting value higher repeatedly ——reagent is used up or not ——reagent is deteriorated or contaminated ——calibrate instrument ——check temperature or pressure if it is norma

№84 слайд
Parameter test incorrect
Содержание слайда: 5 Parameter test incorrect 5 Parameter test incorrect ——calibrate instrument ——check if sampling needle location is right ——check if there is bubble in fluid syringe, piston slides smoothly. If there is bubble, please make sure that reagent tubing connection is normal. ——check solenoid valves if they work normally 6 Printer cannot print ——check printer if there is no paper ——check if normally connected ——check printer setup in system setup

№85 слайд
QC not in target range QC not
Содержание слайда: 7 QC not in target range 7 QC not in target range ——check reagent validity period ——check setup if it is right, and necessary to modify parameter. ——make sure that QC process is not contaminated ——test again in other method

№86 слайд
Конец Благодарю!
Содержание слайда: Конец Благодарю!

Скачать все slide презентации Основы гематологии для инженеров. Приборы, реагенты, кровь одним архивом: